Сфинксы воспаление молочных желез

Мастит у кошки представляет собой воспалительное заболевание, которое поражает молочные железы животного. Сопровождается недуг сильной болью, набуханием сосков и другими неприятными для кошки симптомами. Кормящие кошки находятся в зоне повышенного риска заражения маститом.

Лечение должно быть незамедлительным, в самых запущенных случаях назначается хирургическое вмешательство.

Причины появления мастита

Мастит у кошки – это одна из самых распространенных проблем в послеродовом периоде. Но болезнь может возникнуть и по другим причинам. Мастит у нерожавшей кошки чаще всего развивается на фоне ослабленного иммунитета.

Факторы риска для нерожавшей кошки:

механическое повреждение сосков — травмы, царапины, ожоги;
грибковое или бактериальное инфицирование – происходит при повреждении сосков;
слабый иммунитет — патогенные микроорганизмы размножаются и вызывают воспаление;
переохлаждение — из-за сквозняков в квартире или долгих прогулок на улице в зимнее время;
генетика – фактор риска заболевания может передаваться генетически.

Кроме этого, заболевание может начать свое развитие на фоне нервного перенапряжения животного. Например, стерилизация кошки может привести к стрессам, ведь природой заложено размножаться всем живым существам, однако, при неправильной стерилизации, когда врач удаляет только рога матки, оставляя при этом яичники, оплодотворения не происходит и организм подвергается сильным стрессам.

Мастит у кормящей кошки может развиваться по нескольким причинам:

застой молока;
гормональные сбои;
трещины в сосках;
половые заболевания до или после беременности;
переохлаждение молочных желез во время лактации;
осложнения после родов.

Что касается послеродовых осложнений, это может быть гнойный эндометрит или пиометра. Мастит у кошки после родов приводит к тому, что кормление новорожденных котят ложится на плечи хозяина (приходится проводить вскармливание через шприц или пипетку). Помните, неважно какая причина вызвала мастит, при первых подозрениях на заболевание, вы должны отнести питомца в ветеринарную клинику для диагностики и определения лечение.

Симптомы мастита у кошки

Симптомы мастита у кошек очень разнообразны. Внимательный владелец должен обязательно обратить внимание на возникшие симптомы, и лечение должно быть начато своевременно.

Основные симптомы:

кошка не хочет кормить своих котят
припухлость молочных желез;
покраснения и воспаления на сосках;
формирование абсцессов или гангрены;
выделения из молочной железы крови или гноя;
молоко повышенной вязкости;
иногда жалобное мяуканье при кормлении котят;
потеря веса;
лихорадка;
рвота.

Если вы заметили некоторые из этих симптомов у своего питомца, нужно срочно обратиться к ветеринару. Мастит может быть очень серьезным как для матери, так и для ее котят. Иногда признаки могут не проявляться. Пораженные железы могут быть горячими, опухшими и болезненными, но кошка остается здоровой и настороженной.

Мастит может развиваться быстро и без предупреждения, поэтому важно следить за грудными железами животного во время лактации, чтобы можно было предпринять быстрое действие, если будут наблюдаться какие-либо изменения.

Формы мастита

В зависимости от запущенности заболевания, различают две формы мастита. Давайте разберем их более подробно.

Формы мастита:

Серозный мастит или катаральный. Это начальная стадия заболевания. Еще нет серьезных и мучительных для кошки симптомов. Лечение проходит легко и быстро.
Гнойный мастит или абсцедирующий. Более запущенная и поздняя стадия, при которой появляются болезненные и явные признаки. Гнойный мастит у кошки лечится намного сложнее и дольше.

При катаральной форме поведение и состояние питомца особо не поменяется. Можно заметить вялость, отсутствие аппетита и появление творожистых выделений из сосков. С развитием заболевания возникают осложнения (флегмона и абсцесс). Это может быть опасно для жизни животного. Кошачий мастит может погубить кошку. Хозяева своих любимцев должны вовремя обратиться за профессиональной помощью, а иначе лечение может быть не только долгим, но и малоэффективным.

Подробнее о мастите у животных — в Ветеринарном справочнике.

Диагностика мастита у кошки

Если у кошки мастит для диагностирования болезни ветврач проведет визуальный осмотр сосков и опросит про проявившиеся симптомы.

Возможно, будут назначены такие методы диагностики:

Цитология (исследование клеток) секреции молочной железы.
Сбор образцов молока.
Анализ крови: в случае заражения будет наблюдаться рост лейкоцитов, а в случае гангрены произойдет изменение тромбоцитов.

Результаты исследований подтвердят или опровергнут подозрения специалиста.

Лечение мастита у кошек

Мастит у кошки – это болезнь, которая требует своевременного лечения. Существует несколько различных схем лечения, и точное лечение будет зависеть от тяжести недуга.

Первой формой лечения мастита является антибиотик, и какой вид назначит врач, будет зависеть от рН-теста кошачьего молока, что чрезвычайно важно для эффективного лечения этой инфекции.

Уровень pH кошачьего молока — это измерение кислотности или щелочности молока, и оно измеряется в диапазоне от 0 до 14.

Нейтральное число обычно считается равным 7,0, но большинство уровней рН кошек находятся между 6,6 и 6,9. Если это 7.0 или выше, это риск. Как только ваш ветеринар определит этот уровень, будут назначены антибиотики. Лечение в домашних условиях предусматривает этот метод терапии. При запущенной стадии препараты будут вводиться внутривенно.

Какие уколы кошке может назначить врач:

Глюконат кальция 10%. Укол делается внутривенно или внутримышечно. Лекарство нагревается до комнатной температуры . Повторить через 2 дня.
Катозал 10%. Уколы делаются ежедневно на протяжении примерно 5 дней. Гамавит.. Проводить инъекцию один раз в день на протяжении недели подкожно.
Мастометрин. Проводить уколы до исчезновения симптомом. Курс лечения около двух недель.
Новокаиновая блокада. Инъекция однократная. Колется между пораженной молочной железой и брюшной полостью.

Вылечить мастит на поздних стадиях сложно. В этом случае нужно прислушиваться врача и выполнять все его рекомендации.

Наружное лечение предусматривает применение мазей. Многие из препаратов противопоказаны беременным и кормящим животным. Как лечить мастит у кошки, и какие мази можно использовать? Давайте узнаем об этом методе терапии более подробно.

Действенные мази:

Ихтиоловая;
мазь календулы;
Гамабиол;
Травма-гель;
Ируксоветин;
Левомеколь;
Мастиет Форте.

Если есть гной или кровь, тогда ежедневно нужно протирать пораженные молочные железы перекисью водорода или хлоргексидином.

Однако ни в коем случае нельзя начинать лечение самостоятельно! Это может только навредить Вашему питомцу.

При появлении первых симптомов заболевания, кошку обязательно нужно показать ветеринарному врачу. Только врач сможет назначить лечение в соответствии с общим состоянием животного, характера заболевания и индивидуальных особенностей организма.

Лечение мастита у кошки в домашних условиях

Когда маститом заболевает питомец, нужно приложить все усилия, чтобы остановить болезнь на стадии развития. Есть несколько рецептов с применением народных средств. Лечение мастита у кошек в домашних условиях поможет только на первой стадии, когда симптомы протекают в менее агрессивной форме.

Лечение народными средствами:

Компрессы. Приготовьте отвар из 1 ст.л. коры дуба и 1 ст.л. шалфея на 300 мл воды. Остудите до 38 градусов и промокните небольшое полотенце в полученном отваре. Приложите к пораженной зоне на 10 минут. Для усиления эффекта можно добавить 30 мл спирта.
Капустные листы. Возьмите самый сочный и свежий капустный лист и немного отбейте его, чтобы появился сок. Приложите к животику питомца на 5-7 минут. Это принесет охлаждение и уменьшение боли.

Предлагайте всегда чистую и немного подогретую воду. Кормите питомца вкусной и полезной едой. Это могут быть бульоны, вареное мясо, влажные корма. Лечить мастит у кошки в домашних условиях нужно только после осмотра у специалиста и выявления причины. При ослабленном иммунитете у питомца посоветуйтесь по поводу витаминных добавок.

Мастит у кормящей кошки: как лечить в домашних условиях

Если болезнь только начинает развиваться, то первое что нужно сделать, это сцедить немного молока с припухшей молочной железы. Это снизит дискомфорт. Если кошка продолжает вскармливание котенка или котят, тогда их нужно изолировать, чтобы малыши не продолжали заражаться через молоко. После отнятия котят можно приступать к лечению.

Итак, как помочь кормящей кошке:

утеплите ее место для отдыха;
обеспечьте полноценное и высококалорийное кормление;
всегда должна быть чистая вода;
теплые примочки из смеси ромашки и шалфея;
аккуратный массаж больной молочной железы с применением камфорного масла;
сцеживание молока.

Одним из главных пунктов домашнего лечения является обеспечение больным кошкам кормление с продуктами, обогащенными витаминами и полезными веществами. Кроме всего перечисленного можно также прикладывать капустный лист для охлаждения пораженной молочной железы.

Профилактика

Для того чтобы предотвратить болезнь, многие владельцы кошек предпочитают стерилизовать животное. У стерилизованного питомца будет намного меньше рисков заболевания маститом, однако окончательно предотвратить болезнь с помощью стерилизации не удастся, так как болезнь имеет и другие причины, помимо беременности и лактации.

Меры профилактики мастита:

уход за питомцем и соблюдение его гигиены;
при возникновении трещинок на сосках должна проводиться обработка марганцовкой;
после родов нужно обработать соски специальными мазями или растворами;
проводите рекомендуемые прививки;
осматривайте кошку и следите за любыми симптомами;
если новорожденные котята не выпивают все молоко, нужно немного сцедить кошку;

Помните, что игнорирование симптомов заболевания и несвоевременное лечение может привести к смертельному исходу. Болезнь всегда лучше предотвратить, нежели потом длительно и иногда безрезультатно ее лечить.

Источник

E. Ozenc, M.F. Bozkurt, Faculty of Veterinary Medicine, Afyon Kocatepe University, Afyonkarahisar, Turkey

Фиброэпителиальная гиперплазия (ФЭГ) молочных желёз кошек (также известная как фиброаденоматозная гиперплазия или гиперплазия молочных желёз у кошек) была впервые описана в 1973 году [1, 6]. Данное состояние характеризуется неопухолевой пролиферацией междольковых каналов и окружающих их клеток стромы молочной железы [5]. ФЭГ развивается в тканях молочных желёз под влиянием прогестерона жёлтого тела и наиболее часто наблюдается у молодых, сукотных или несукотных нестерилизованных кошек [1, 7, 9, 6]. Клинические случаи ФЭГ также были отмечены у кошек и котов любых возрастов, получавших синтетические прогестины [7, 8, 9, 10]. По нашим сведениям, до настоящего времени в ветеринарной литературе не было описано случаев ФЭГ в области сосков. Цель данного исследования — оценить клинический случай ФЭГ сосков кошки с точки зрения клинических и патоморфологических параметров.

Несмотря на то, что сфинкс известна как порода бесшёрстных кошек, они могут иметь шёрстный покров в области носа, хвоста и пальцев [14, 4]. В Европе численность сфинксов имела тенденцию к увеличению, и в данный момент эта порода кошек является одной из наиболее популярных в мире [3, 2]. Несмотря на то, что опубликованы исследования на тему кожных заболеваний, мышечной дистрофии и заболевания сердца у сфинксов [12, 17, 3, 15], в ветеринарной литературе отсутствуют отчёты о гиперплазии и опухолях молочных желёз у данной породы.

Описание клинического случая

Трёхлетняя кошка породы сфинкс была доставлена в клинику отделения акушерства и гинекологии факультета ветеринарной медицины университета Афион по причине новообразований, обнаруженных в сосках. Анамнез выявил, что кошка дважды котилась. Новообразования сначала имели вид покраснений, а затем в течение 6–12 месяцев приобрели вид масс, свисающих с концов сосков. Клиническое обследование выявило наличие данных новообразований на всех сосках, кроме правого пахового (фото 1А). При обследовании долей молочных желёз воспаления и новообразований выявлено не было.

Фото 1. А) Макроскопический вид атипичной фиброэпителиальной гиперплазии сосков. Б) Лигатура наложена между соском и новообразованием. В) Новообразование было перерезано над лигатурой и удалено. Г) Соски и молочные железы через два месяца после операции

Сосковые новообразования были удалены под общим наркозом. Премедикация кошки состояла из 0,045 мг/кг атропина сульфата (Belladone, 2 mg/ml, Alke, Стамбул, Турция). Общий наркоз был выполнен с помощью 2 мг/кг ксилазина гидрохдорида (Alfazyne® 2%, Ege Vet, Измир, Турция) и 10 мг/кг кетамина гидрохлорида (Alfamine®, 10%, Ege Vet, Измир, Турция). Операционное поле было подготовлено и продезинфицировано, пока животное находилось в положении «лёжа на спине». Для удаления новообразования между соском и началом новообразования на соске наложена лигатура (фото 1Б). Резекция новообразования была проведена над лигатурой, после чего новообразование было удалено таким образом, чтобы лигатура осталась на соске (фото 1В). Во время контрольного исследования, проведённого на второй месяц после операции, не было выявлено патологий сосков и молочных желёз (фото 1Г). Однако спустя год после операции похожее новообразование было обнаружено над правой паховой долей молочной железы, где его ранее не наблюдали. Оно было удалено под общим наркозом с помощью похожей техники, и все новообразования были впоследствии направлены в патологическую лабораторию.

При макроскопическом исследовании правый грудной, правый передний брюшной и правый задний брюшной соски были 0,7 см, 1,3 см и 1,3 см в диаметре соответственно; левый грудной, левый передний брюшной, левый задний брюшной и левый паховый соски имели диаметры 1,4 см, 0,6 см, 1,5 см и 0,9 см соответственно и отличались твёрдой консистенцией при пальпации. Кроме того, поверхности сосков были изъязвлены, кожа имела толщину 2–5 мм и коричнево-чёрную окраску. Поверхности срезов имели гомогенную серую окраску.

Ткани были зафиксированы в 10% растворе формалина в нейтральном буфере, обработаны и запрессованы в парафин, нарезаны на секции толщиной 5 микрометров и окрашены гематоксилин-эозином (ГЭ) и трихромом.

Фото 2.
А, Б) Гистопатологический вид атипичной фиброэпителиальной гиперплазии сосков. ГЭ и трихром
В) Гистопатологический вид гнойного воспаления и изъязвлений кожи. ГЭ
Г) Виментин-положительные клетки соединительной ткани вокруг аденоидной области. АЭК хромоген, гематоксилин Гилла
Д) ГМА-положительные миоэпителиальные клетки в основании областей гиперплазии
Е) ЯАПК-положительные ядра клеток желёз, АЭК хромоген, гематоксилин Гилла

При гистопатологическом исследовании наблюдались клетки, изначально происходящие из канальцев молочной железы, которые, однако, проникли за пределы канальца, чтобы дать начало областям развивающейся эпителиальной гиперплазии. Эти клетки были полностью окружены обширной областью соединительной ткани, состоящей из фиброцитов и богатых коллагеном фибробластов (фото 2А, 2Б). Все эти изменения сопровождались очагами изъязвлений, состоящими преимущественно из нейтрофильных лейкоцитов, эритроцитов и бактерий (фото 2В).

Иммуногистохимическое исследование проводилось с применением следующих антител для разграничения соединительной и мышечной тканей: виментин (разведение 1/200, Abcam, ab28028), десмин (разведение 1/50, Genetex, GTX28592) и гладкомышечный актин (ГМА, разведение 1/100, SantaCruz, SC-53142). Антитело на ядерный антиген пролиферирующих клеток (ЯАПК, разведение 1/500, Abcam, ab18197) использовалось для выявления изменений в клеточной пролиферации. С этой целью антиген был выделен воздействием микроволн на тампон, пропитанный цитратным раствором. После инкубации с первичными антителами, в качестве вторичных антител были использованы биотинилированные антикроличий и антимышиный IgG (BA-1100, BA2000, Vectorlab). Набор конъюгированного авидин-биотинового комплекса (АБК) (PK-6100, Vectorlab) использовался вместе с пероксидазным ферментом. Образцы тканей окрашивали с помощью 3-амино-9-этилкарбазолового (АЭК, Invitrogen, 00200) субстрата. Для окраски фона использовался гематоксилин Гилла (I). Предметные стёкла покрывали водянистой заливочной средой. Все стёкла были исследованы и сняты под световым микроскопом.

Иммуногистохимический анализ показал, что клетки, окружающие гиперплазированный эпителий, имели положительную реакцию на виментин (фото 2Д) и отрицательную на десмин и ГМА. Миоэпителиальные клетки в основаниях областей гиперплазии дали положительную реакцию на ГМА (фото 2Е). Пролиферативная активность, измеренная с помощью окраски на ЯАПК, достигала 50 % в гиперплазированных клетках (фото 2Ж).

Основываясь на результатах исследований, данные новообразования сосков были диагностированы как атипичная фиброэпителиальная гиперплазия.

Обсуждения и выводы

Это первое описание атипичного проявления кошачьей фиброэпителиальной гиперплазии сосков у кошек. В литературе упоминаются фиброаденоматозные изменения молочных желёз у кошек в результате экзогенного или эндогенного поступления прогестерона в организм молодых и беременных животных [13]. Эти поражения могли затрагивать одну или более молочные железы и были способны к быстрому росту, тем самым вызывая клинические проблемы. В данном случае в тканях молочных желёз не было обнаружено патологических новообразований. ФЭГ была выявлена только на концах сосков. Кроме того, животное не было беременным и в анамнезе не было упоминаний об использовании прогестерона. Данный клинический случай характеризуется восемью сосковыми новообразованиями, отмечавшимися в течение двухлетнего периода. Так как возраст кошки составлял три года, мы полагаем, что подобные новообразования также возможны и у животных более зрелого возраста.

Фото 3. Подстилка кошки

В качестве подстилочных материалов для кошек часто используются акриловые, полиэстеровые и хлопковые ткани. В данном случае в качестве подстилки использовался плюшевый мех из полиэстера (фото 3). При производстве синтетических полиэстеровых волокон используется химическое вещество меркаптобензотиазол, обладающее раздражающими свойствами. У человека прямой контакт с данным материалом или субстанцией, используемой при его производстве, способен вызвать патологии кожи, такие как, например, контактный ирритантный дерматит [11]. Кошки породы сфинкс лишены шёрстного покрова, и мы предполагаем, что лежание на плюшевой постилке привело к развитию местного раздражения и зуда в области сосков, что впоследствии развилось в изменения воспалительного характера и ФЭГ. Повсеместное использование подстилок данного типа для обеспечения комфорта кошек может представлять риск для здоровья животного и потенциальную опасность, которую следует сделать предметом дальнейших исследований.

Клинически фиброаденоматозные изменения обычно представлены безболезненными, куполообразными, плотными, ограниченными участками тканей молочных желёз [16]. Микроскопически фиброаденоматозные изменения часто имеют отёчную или слизистую волокнистую строму [5]. Однако в данном случае мы наблюдали, что пролиферативные эпителиальные клетки канальцев были полностью окружены плотной волокнистой соединительной тканью, содержащей большое количество коллагеновых волокон и фиброцитов. Присутствие этой плотной волокнистой соединительной ткани наиболее совместимо с атипичным проявлением фиброэпителиальной гиперплазии кошек. Мы полагаем, что атипичная ФЭГ развилась из-за близкого расположения сосков к земле, а также их хронического раздражения в ответ на трение о подстилку.

Данный отчёт описывает первый случай атипичного проявления фиброэпителиальной гиперплазии в области сосков кошки. Мы наблюдали двустороннюю ФЭГ, которая также может наблюдаться у животных более зрелого возраста.

Литература

1. Allen HL (1973): Feline mammary hypertrophy. Veterinary Pathology 10, 501–508.

2. CFA (2014): Sphynx. Avialable online at: https://www.cfa.org/Breeds/BreedsSthruT/Sphynx.aspx Accessed 2 January, 2014.

3. Chetboul V, Petit A, Gouni V, Trehiou-Sechi E, Misbach C, Balouka D, Carlos Sampedrano C, Pouchelon JL, Tissier R, Abitbol M (2012): Prospective echocardiography and tissue Doppler screening of a large Sphynx cat population: reference ranges, heart disease prevalence and genetic aspects. Journal of Veterinary Cardiology 14, 497–509.

4. Gandolfi B, Outerbridge CA, Beresford LG, Myers JA, Pimentel M, Alhaddad H, Grahn JC, Grahn RA, Lyons LA (2010): The naked truth: Sphynx and Devon Rex cat breed mutations in KRT71. Mammalian Genome 21, 509–515.

5. Goldschmidt M, Pena L, Rasotto R, Zappulli V (2011): Classification and grading of canine mammary tumors. Veterinary Pathology 48, 117–131.

6. Gorlinger S, Kooistra HS, van den Broek A, Okkens AC (2002): Treatment of fibroadenomatous hyperplasia in cats with aglepristone. Journal of Veterinary Internal Medicine 16, 710–713.

7. Hayden DW, Johnston SD, Kiang DT, Johnson KH, Barnes DM (1981): Feline mammary hypertrophy/fibroadenoma complex: clinical and hormonal aspects. American Journal of Veterinary Research 42, 1699–1703.

8. Hayden DW, Barnes DM, Johnson KH (1989): Morphologic changes in the mammary gland of megestrol acetate-treated and untreated cats: a retrospective study. Veterinary Pathology 26, 104–113.

9. Johnston SD, Kustritz MVR, Olson PNS (2001): Chapter 34 Disorders of the mammary glands of the queen. In: Johnston SD, Kustritz MVR, Olson PNS (eds.): Canine and Feline Theriogenology. 1st ed. WB Saunders Company, Philadelphia. 474–485.

10. Loretti AP, Ilha MR, Ordas J, Martin de las Mulas J (2005): Clinical, pathological and immunohistochemical study of feline mammary fibroepithelial hyperplasia following a single injection of depot medroxyprogesterone acetate. Journal of Feline Medicine Surgery 7, 43–52.

11. Maiphetlho, L (2007): Contact dermatitis in the textile industry. Current Allergy and Clinical Immunology 20, 28–35.

12. Martin PT, Shelton GD, Dickinson PJ, Sturges BK, Xu R, LeCouteur RA, Guo LT, Grahn RA, Lo HP, North KN, Malik R, Engvall E, Lyons LA (2008): Muscular dystrophy associated with alpha–dystroglycan deficiency in Sphynx and Devon Rex cats. Neuromuscular Disorders 18, 942–952.

13. Misdorp W (2002): Tumours of the mammary gland. In: Meuten DJ (ed.): Tumors in Domestic Animals. 4th ed. Iowa State Press, Ames, Iowa, USA. 575–606.

14. Robinson R (1973): Canadian hairless or Sphinx cat. Journal of Heredity 64, 47–49.

15. Silverman SJ, Stern JA, Meurs KM (2012): Hypertrophic cardiomyopathy in the Sphynx cat: a retrospective evaluation of clinical presentation and heritable etiology. Journal of Feline Medicine and Surgery 14, 246–249.

16. Sontas BH, Turna O, Ucmak M, Ekici H (2008): What is your diagnosis? Feline mammary fibroepithelial hyperplasia. Journal of Small Animal Practice 49, 545–547.

Volk AV, Belyavin CE, Varjonen K, Cadiergues MC, Stevens KB, Bond R (2010): Malassezia pachydermatis and M nana predominate amongst the cutaneous mycobiota of Sphynx cats. Journal of Feline Medicine and Surgery 12, 917–922.

Источник: Veterinary Medicina 59, 2014 (5). This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution License (https://creativecommons.org/ licenses/by/2.0), which permits unrestricted use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited

СВМ № 5/2014

Источник